植物组培抗菌剂

Plant Preservative Mixture (PPM) 植物组培抗菌剂

——植物培养防腐剂（抗菌剂）/生物杀灭剂/农药

关键词：植物培养抗菌剂（plant culture preservative），农药（biocide），抗真菌剂，抑制农杆菌生长；

作用机制：

PPM（Plant Preservative Mixture，植物组培抗菌剂）是用于植物细胞培养中的一种强效且广谱的生物杀灭剂，由多种抗菌剂组合而成的混合物，能杀死植物组培培养基和污染组织内的细菌和真菌，作用机制在于能够穿透细菌或真菌细胞壁，抑制柠檬酸循环和电子传递链等中心代谢循环中关键酶的生物活性，以及抑制培养基内单糖和氨基酸往细菌或者真菌细胞的运输。取决于PPM剂量和污染程度，PPM可用作植物培养基内的生物杀灭剂组分。PPM还可用作生物静力化合物起到预防效果。除此之外，PPM能有效抑制植物培养液体或半固体培养中通过空气、水、人传播的微生物污染以及内源性污染，但不会影响体外种子发芽、愈伤组织生长以及根茎再生。

适用植物类型：

PPM有效作用于大多数种子裸露植物（被子植物和裸子植物），但不适合用于蕨类，藓类，藻类和水生植物。【PPM是一种非常有效的抗微生物剂以预防和去除组培污染，然而不能替代实验室的无菌处理试剂，建议使用合适的空气无菌处理系统。】

产品优势【与传统的植物组培抗微生物剂相比】：

1）适当浓度下不会影响大多数植物生长；2）极低浓度即可维持无菌的培养环境；3）可预处理新生种子或清洗组织；4）热稳定性强，高压灭菌非常稳定；5）比传统抗生素价格更低廉，可作为组培培养基内的标准成分，并作为常规使用；6）靶向抑制多种酶活性，植株产生耐药性的几率非常低；

产品特性：

外观：清澈，透明至琥珀色溶液，pH 3.8

保存和稳定性：4°C，3年有效

使用特点：1）PPM可在灭菌前加入培养基或者分液前直接加入灭菌培养基；

          2）PPM可在压力15 psi（1.05 kg/cm²），121°C灭菌20min；

          3）PPM需要灭菌后（post-autoclave）后加入含蛋白质的培养基内，之后将混合好的培养基倒入培养皿；

4）工作浓度的PPM（经培养基稀释）可室温稳定存放高达1个月；

使用浓度参考：

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应用文献：

Miyazaki J, Tan BH, Errington SG.  Eradication of endophytic bacteria via treatment for axillary buds of Petunia hybrida using Plant Preservative Mixture (PPM^TM). PCTOC. 2010;102(3):365-372.

Miyazaki J, Tan BH, Errington SG, Kuo JS. Bacterial endophyte in Macropidia fuliginosa: its localisation and eradication from in vitro cultured basal-stem callus. Aust J Bot. 2011;59(4):363-368.

Lata H, Chandra S, Khan IA, ElSohly MA. Propagation through alginate encapsulation of axillary buds of Cannabis sativa L. — an important medicinal plant.  Phys and Mol Biol of Plants. 2009;15(1):79-86.

Greer SP, Rinehart TA.  Dormancy and Germination In Vitro Response of Hydrangea macrophylla and Hydrangea paniculata Seed to Light, Cold-Treatment and Gibberellic Acid. J. Environ. Hort. 2010;28(1):41–47.

Moghaddam S, et al. Optimization of an Efficient Semi-Solid Culture Protocol for Sterilization and Plant Regeneration of Centella asiatica (L.) as a Medicinal Herb. Molecules. 2011;16(11): 8981-8991

?olgecen H, Koca U, Toker G. Infl uence of diff erent sterilization methods on callus initiation and production of pigmented callus in Arnebia densifl ora Ledeb. Turk J Biol. 2011; 35:513-520

Pouvreau J, et al. A high-throughput seed germination assay for root parasitic plants. Plant Methods 2013;9:32

Marecik R, Bialas W, Cyplik P, Lawniczak L, Chrzanowski L. Phytoremediation Potential of Three Wetland Plant Species Toward Atrazine in Environmentally Relevant Concentrations. Pol. J. Environ. Stud. 2012;21(3):697-702

Pérez Flores J, Aguilar Vega ME, Roca Tripepi R. Assays for the in vitro establishment of Swietenia macrophylla and Cedrela odorata. Rev. Colomb. Biotecnol. 2012;14(1)

Nesterenko-Malkovskaya A, Kirzhner F, Zimmels Y, Armon R. Eichhornia crassipes capability to remove naphthalene from wastewater in the absence of bacteria. Chemosphere. 2012;87(10):1186-1191.

Kieffer M, Fuller MP. In Vitro Propagation of Cauliflower Using Curd Microexplants. Meth Mol Biol. 2013;994:329-339.

Kodym A, Temsch E, Bunn E, Delpratt J. Ploidy stability of somatic embryo-derived plants in two ecological keystone sedge species (Lepidosperma laterale and L. concavum, Cyperaceae). Aust J Bot. 2012;60(5):396-404.

Pe?a-Ramírez YJ, et al. Induction of somatic embryogenesis and plant regeneration in the tropical timber tree Spanish red cedar [Cedrela odorata L. (Meliaceae)]. PCTOC. 2011;105(2):203-209.

Haddadi F, Adb Aziz M, Saleh G. Abd Rashid A, Kamaladini H. Micropropagation of Strawberry cv. Camarosa: Prolific Shoot Regeneration from In Vitro Shoot Tips Using Thidiazuron with N6-benzylamino-purine. HortScience. 2010;45(3):453-456.

Jimenez VM, Castillo J, Tavares E, Guevara E, Montiel M. In vitro propagation of the neotropical giant bamboo, Guadua angustifolia Kunth, through axillary shoot proliferation. PCTOC. 2006;86:389–395.

Compton ME, Koch JM. Influence of Plant Preservative Mixture (PPM) on adventitous organogenesis in Melon, Petunia, and Tobacco. In Vitro Cell. Dev. Biol.- Plant. 2001;37:259-261.